Wie züchtet man Haworthia stripedii? Zuchtmethoden und -techniken von Haworthia stripedii

Heutzutage ist es beliebt, Sukkulenten zu züchten. Das Anpflanzen von Sukkulenten ist einfach und die spätere Pflege und Wartung ist nicht umständlich, weshalb viele Menschen gerne Sukkulenten züchten. Was ich Ihnen heute vorstellen werde, ist Haworthia. Welche Schritte sollten Sie als Anfänger beim Pflanzen von Haworthia beachten? Als nächstes zeigen wir Ihnen, wie Sie Haworthia striata züchten.

Wie man Haworthia striata züchtet

So reproduzieren Sie Haworthia striata

Häufig verwendete Vermehrungsmethoden sind Teilung und Stecklinge. Die Teilung kann ganzjährig erfolgen. Meist werden beim Umtopfen im April oder Mai die Jungpflanzen rund um die Mutterpflanze abgetrennt und direkt in Töpfe gepflanzt. Am besten werden Stecklinge zwischen Mai und Juni gepflanzt. Schneiden Sie die fleischigen Blätter mit einem kleinen Teil des halb verholzten Teils ab und stecken Sie sie in ein sauberes Substrat aus Flusssand. Es dauert etwa 20 bis 25 Tage, bis sie Wurzeln schlagen. Am besten pflanzen Sie sie in Kulturerde um, wenn die Wurzeln 2 bis 3 cm lang sind. Die Teilungsmethode kann in Innenräumen das ganze Jahr über durchgeführt werden, am besten eignet sie sich jedoch von April bis Mai eines jeden Jahres. Schneiden Sie die Jungpflanzen direkt neben der Mutterpflanze ab, trocknen Sie sie leicht ab und pflanzen Sie sie dann in einen anderen Topf.

Vermehrung durch Teilung

Teilungszeitpunkt: Am besten geschieht dies im zeitigen Frühjahr (Februar oder März), nachdem der Boden aufgetaut ist.
Teilungsmethode: Nehmen Sie die Mutterpflanze aus dem Topf, schütteln Sie überschüssige Erde ab, trennen Sie die verwickelten Wurzeln so weit wie möglich und teilen Sie sie mit einem scharfen Messer in zwei oder mehr Pflanzen. Jede Pflanze muss ein beträchtliches Wurzelsystem haben und ihre Blätter sollten richtig beschnitten werden, um das Überleben zu erleichtern.

Desinfektion von Töpfen

Die geteilten Pflänzchen fünf Minuten in 1500-fach verdünntem Benomyl einweichen, herausnehmen und trocknen lassen, dann können sie eingetopft werden. Sie können Benomyl auch zur Wurzelbewässerung direkt nach dem Eintopfen verwenden.

Management nach der Teilung

Nach dem Teilen und Eintopfen die Wurzeln anwässern bzw. einmal ausgiebig wässern. Da das Wurzelsystem stark beschädigt ist und die Wasseraufnahmefähigkeit der Pflanze sehr gering ist, dauert es etwa 3 bis 4 Wochen, bis sie sich erholt und neue Wurzeln ausbildet. Daher sollte das Gießen innerhalb von 3 bis 4 Wochen nach der Teilung eingeschränkt werden, um Wurzelfäule zu vermeiden. Die Transpiration der Blätter wird jedoch nicht beeinträchtigt. Um den Wasserhaushalt der Blätter aufrechtzuerhalten, müssen die Blätter 1 bis 3 Mal am Tag besprüht werden (bei hohen Temperaturen mehr sprühen, bei niedrigen Temperaturen weniger oder gar nicht sprühen). Während dieser Zeit darf nicht düngen. Nach der Teilung sollten Sie auch auf die starke Sonneneinstrahlung achten. Am besten stellen Sie sie zur Pflege in ein Schattenhäuschen.

Schnelle Vermehrung von Gewebekulturen

1. Materialien: Junge Triebe an den Wurzeln der Stängel von Haworthia striata (Pflanzenzellen sind allmächtig, das heißt, jede Pflanzenzelle hat die Fähigkeit, den Pflanzenkörper zu bilden. Mit anderen Worten, jede hochdifferenzierte Zelle hat die Fähigkeit, sich in die ursprüngliche undifferenzierte Zelle zurückzuverwandeln und sich in andere Formen hochdifferenzierter Zellen zu differenzieren. Diese „Allmacht“ ist die theoretische Grundlage der Pflanzengewebekultur. Basierend auf dieser Eigenschaft von Pflanzenzellen kann jede hochdifferenzierte Zelle des Pflanzenkörpers beliebig kultiviert werden, und die jungen Triebe sind die hochdifferenzierten Teile, also werden sie ausgewählt). Gestreifte Haworthia

2. Kulturbedingungen: MS wird als grundlegendes Kulturmedium verwendet. (Zutaten: KNO3: 1650 NH4NO3: 1900 MgSO4.7H2O: 370 KH2PO4: 170 CaCl2.2H2O: 440 MnSO4.4H2O: 22,3 ZnSO4.7H2O: 8,6 H3BO3: 6,2 NaMoO4.2H2O: 0,25 CuSO4.5H2O: 0,025 Na2.EDTA: 37,3 FeSO4.7H2O: 27,8 Inositol: 100 Niacin: 0,5 Glycin: 2 Thiaminhydrochlorid: 0,1 Pyridoxinhydrochlorid: 0,5 KI: 0,83 CoCl2.6H2O: 0,025 Saccharose)

Schneiden Sie die Achselknospen mit 4–5 jungen Blättern von der Stängelwurzel der eingetopften Haworthia-Mutterpflanze ab. 5 Minuten unter fließendem Wasser abspülen, 30 Minuten in 0,2 % Chlorhexidin einweichen und 10 Minuten unter fließendem Wasser abspülen (diese Methode spart Wasser und weist eine sehr geringe Verschmutzungsrate auf). Legen Sie das Material auf eine saubere Bank und desinfizieren Sie es 8 Minuten lang mit 0,1 % HgCl2, spülen Sie es 10-mal mit sterilem Wasser ab und nehmen Sie die Feuchtigkeit mit sterilem Filterpapier auf. Die Knospen wurden mit einem Skalpell abgeschnitten und die abgeschnittenen jungen Blätter in kleine Stücke von 0,5 cm geteilt. In das Kulturmedium inokulieren und kultivieren.

3. Knospenkultur: Die Knospen von Haworthia striata schwellen an und wachsen auf dem Kulturmedium schnell. Nach etwa 20 Tagen werden die verlängerten Knospen in 3-4 Teile geschnitten und in ein anderes Kulturmedium eingeimpft. Nach einer weiteren Woche sprießt an der Basis jeder Knospe ein Büschel junger Triebe (etwa 5–10).

4. Kallus- und Knospeninduktion: Nachdem die jungen Blattsegmente etwa 2 Wochen lang im Kulturmedium kultiviert wurden, erscheint auf der Wundoberfläche eine Schicht aus farblosem und transparentem Kallusgewebe. Nach 20 Tagen Kultur hat sich der Kallus nicht vermehrt, aber es sind 2-3 kleine Knospen daraus gewachsen. Die Knospen wurden abgeschnitten und in ein anderes Kulturmedium überführt, um eine Gruppe kleiner Pflänzchen zu bilden.

5. Wurzelinduktion und Transformation: Die jungen Blattsegmente in D legen und einen Monat kultivieren. An der Wunde bilden sich viele weiße, kugelige Wurzeln, die weiter wachsen. Diese Wurzeln wurden in ein Kulturmedium überführt und etwa eine Woche lang kultiviert. Die Wurzeln wurden grün und es bildete sich Kallusgewebe. Zwei Wochen nach der Übertragung in ein anderes Kulturmedium bildeten sich kugelförmige Embryonen und einige Embryonen begannen, junge Blätter zu entwickeln.

6. Subkultur und schnelle Vermehrung: Das In-vitro-Vermehrungssystem der erhaltenen Pflanze kann durch wiederholte Trennung und Mikroschneiden eine geometrische Vermehrung erreichen. Dieser Prozess wird als schnelle Mikrovermehrung oder schnelle Vermehrung bezeichnet. Die schnelle Pflanzenvermehrung wird normalerweise durchgeführt, nachdem die In-vitro-Vermehrungslinie etabliert wurde. Manchmal kann Kallusgewebe auch schnell vermehrt werden. In diesem Fall wird normalerweise eine flüssige Suspensionskultur verwendet. Die oben erhaltenen Keimlingshaufen oder kugelförmigen Embryonen können grob geteilt und in ein anderes Kulturmedium eingeimpft werden, um sich in großen Mengen zu vermehren; ihre Anzahl verdoppelt sich im Durchschnitt alle zwei Wochen. Unter Verwendung einer Knospe als Exosom wurden zwei Monate später mehr als 20 Flaschen mit Subkulturpflanzen (etwa 30 Pflanzen in jeder Flasche) erhalten.

7. Sämlinge stärken und Wurzeln schlagen lassen: Die großen Sämlinge in Kulturmedium E impfen, die Lichtintensität auf 10 h/d erhöhen und nach einer Woche werden sie Wurzeln schlagen. Nach einer weiteren Woche Kultivierung können sie umgepflanzt werden. (Wenn die Gewebekulturtechnologie angewendet wird, um die Gesamtform einer bestimmten Pflanze zu bilden, d. h. um einen Setzling mit Stielen, Wurzeln und Blättern zu erhalten, muss dieser einer bestimmten Setzlingshärtungsbehandlung unterzogen werden, damit er allmählich von einer sterilen Umgebung in eine bakterielle Umgebung und von einer künstlichen Kulturumgebung in eine natürliche Umgebung übergeht. Es ist üblich, die „Übergangsbehandlungsmethode“ anzuwenden, d. h. die Umgebung allmählich zu ändern, z. B. durch Verwendung von sterilisierter Erde, Befeuchtung und Wärmekonservierung für Flaschensetzlinge, und gleichzeitig müssen bestimmte Setzlingsstärkungsbehandlungen durchgeführt werden, z. B. durch Erhöhen der Lichtmenge und Ergänzen der Nährlösung. Nach einer Reihe von Behandlungen wird ein aus der Gewebekultur gezüchteter „Klonsetzling“ erfolgreich überleben.)

8. Umpflanzen: Vor der Entnahme der Samen die Flasche öffnen und die Samen zwei Tage lang abhärten lassen. Waschen Sie das Kulturmedium von den bewurzelten Setzlingen ab und übertragen Sie sie in eine sterile Matrix aus Vermiculit + Perlit. Halten Sie die Luftfeuchtigkeit aufrecht und die Überlebensrate liegt bei über 90 %.